Code: OIV 451, IPGRI 0, IPGRI

Nom: Inflorescence: degré de résistance au mildiou

Description: Compte tenu de la grande variété génétique de l’agent pathogène responsable du mildiou de la vigne (Plasmopara viticola) dans le monde, le choix de la source d’inoculum ne permet pas de garantir une évaluation universelle du niveau d’avancement de la maladie en plein champ. Les essais en laboratoire doivent être conduits sur des échantillons d’inflorescences présentant des fleurs agglomérées ou séparées (stades BBCH 55-57), obtenus à partir de vignes cultivées sous serre ou en plein champ et n’ayant été traitées avec aucun produit phytosanitaire, inducteurs de résistance et biostimulants compris. Mode opératoire Observation à faire à la préfloraison (formation des boutons floraux, stade E-L 17) sur des vignes non soumises à des traitements chimiques, cultivées en plein champ ou, préférablement, sous serre (il est possible d’employer des techniques agronomiques permettant d’avancer la floraison, comme par exemple la production de boutures fructifères). a) Entretien de l’inoculum: comme indiqué dans OIV 452-1. b) Protocole de multiplication: comme indiqué dans OIV 452-1. c) Protocole d’ensemencement: Faire tremper les inflorescences prélevées pendant 2 h dans une suspension de spores (10 000 spores/ml), puis placer les échantillons sur des plaques stériles contenant 1 % d’agar-agar et couvertes d’un papier filtre stérile humidifié. Introduire le pédoncule dans l’agar-agar (étape essentielle pour maintenir les inflorescences vivantes) et laisser incuber les plaques à 21 °C à l’obscurité complète (sous papier aluminium) pendant 2 jours. Les exposer ensuite à la lumière avec une photopériode de 16/8 (16 heures de lumière et 8 heures d’obscurité) pendant 5 jours supplémentaires. Laisser les inflorescences trop longtemps au contact de l’inoculum pouvant entraîner leur pourrissement, la suspension de spores doit être éliminée 24 heures après l’ensemencement en séchant les inflorescences 40-45 minutes sous hotte à flux laminaire. d) Notation des symptômes: Observer l’étendue et la densité de la zone sporulée sur toute la longueur de l’échantillon. Distribution de la maladie sur toute la longueur de l’inflorescence: 1 = Sporangiophores très abondants qui affectent l’ensemble de l’organe et la majorité des inflorescences. 3 = Sporulation abondante localisée en grandes taches. 5 = Sporangiophores abondants et dispersés. 7 = Sporulation ponctuelle. 9 = Absence de sporulation. Paramètres optionnels SD: densité de sporulation de Plasmopara viticola sur une unique grappe de fleurs: 1 = Sporangiophores extrêmement denses et chevauchants. 3 = Sporangiophores relativement denses mais non chevauchants. 5 = Sporangiophores dispersés. 7 = Sporulation rare au niveau d’un sporangiophore unique. 9 = Absence de sporulation. Nspor: nombre de spores. Introduire chaque échantillon dans un tube de 50 ml, ajouter 1-5 ml d’eau distillée et agiter. Écarter le tissu végétal et centrifuger la solution de spores à 3000 rpm pendant 10 min. Éliminer 0,7-3,5 ml de solution en prenant soin de ne pas toucher le fond du tube. Agiter doucement la solution pour remettre les spores en suspension et les compter dans une chambre de comptage.

Catégorie: STRESS BIOTIQUE_ABIOTIQUE, GROUPE DE CARACTÈRES, ORGANE

Sous-catégorie : MILDIOU, RÉSISTANCE BIOTIQUE - CHAMPIGNONS, INFLORESCENCE

Liste de priorité des descripteurs primaires

Description

Compte tenu de la grande variété génétique de l’agent pathogène responsable du mildiou de la vigne (Plasmopara viticola) dans le monde, le choix de la source d’inoculum ne permet pas de garantir une évaluation universelle du niveau d’avancement de la maladie en plein champ. Les essais en laboratoire doivent être conduits sur des échantillons d’inflorescences présentant des fleurs agglomérées ou séparées (stades BBCH 55-57), obtenus à partir de vignes cultivées sous serre ou en plein champ et n’ayant été traitées avec aucun produit phytosanitaire, inducteurs de résistance et biostimulants compris. Mode opératoire Observation à faire à la préfloraison (formation des boutons floraux, stade E-L 17) sur des vignes non soumises à des traitements chimiques, cultivées en plein champ ou, préférablement, sous serre (il est possible d’employer des techniques agronomiques permettant d’avancer la floraison, comme par exemple la production de boutures fructifères). a) Entretien de l’inoculum: comme indiqué dans OIV 452-1. b) Protocole de multiplication: comme indiqué dans OIV 452-1. c) Protocole d’ensemencement: Faire tremper les inflorescences prélevées pendant 2 h dans une suspension de spores (10 000 spores/ml), puis placer les échantillons sur des plaques stériles contenant 1 % d’agar-agar et couvertes d’un papier filtre stérile humidifié. Introduire le pédoncule dans l’agar-agar (étape essentielle pour maintenir les inflorescences vivantes) et laisser incuber les plaques à 21 °C à l’obscurité complète (sous papier aluminium) pendant 2 jours. Les exposer ensuite à la lumière avec une photopériode de 16/8 (16 heures de lumière et 8 heures d’obscurité) pendant 5 jours supplémentaires. Laisser les inflorescences trop longtemps au contact de l’inoculum pouvant entraîner leur pourrissement, la suspension de spores doit être éliminée 24 heures après l’ensemencement en séchant les inflorescences 40-45 minutes sous hotte à flux laminaire. d) Notation des symptômes: Observer l’étendue et la densité de la zone sporulée sur toute la longueur de l’échantillon. Distribution de la maladie sur toute la longueur de l’inflorescence: 1 = Sporangiophores très abondants qui affectent l’ensemble de l’organe et la majorité des inflorescences. 3 = Sporulation abondante localisée en grandes taches. 5 = Sporangiophores abondants et dispersés. 7 = Sporulation ponctuelle. 9 = Absence de sporulation. Paramètres optionnels SD: densité de sporulation de Plasmopara viticola sur une unique grappe de fleurs: 1 = Sporangiophores extrêmement denses et chevauchants. 3 = Sporangiophores relativement denses mais non chevauchants. 5 = Sporangiophores dispersés. 7 = Sporulation rare au niveau d’un sporangiophore unique. 9 = Absence de sporulation. Nspor: nombre de spores. Introduire chaque échantillon dans un tube de 50 ml, ajouter 1-5 ml d’eau distillée et agiter. Écarter le tissu végétal et centrifuger la solution de spores à 3000 rpm pendant 10 min. Éliminer 0,7-3,5 ml de solution en prenant soin de ne pas toucher le fond du tube. Agiter doucement la solution pour remettre les spores en suspension et les compter dans une chambre de comptage.

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