Tecniche analitiche e di controllo microbiologico analisi comuni a tutte le monografie
RISOLUZIONE OIV-OENO 632-2021
TECNICHE ANALITICHE E DI CONTROLLO MICROBIOLOGICO ANALISI COMUNI A TUTTE LE MONOGRAFIE
ATTENZIONE: questa risoluzione modifica le seguenti risoluzioni: - OENO 17/2003 - OIV-OENO 328-2009 - OIV-OENO 329-2009 |
L'ASSEMBLEA GENERALE,
VISTO l’articolo 2, paragrafo 2 b) iv dell'Accordo del 3 aprile 2001 che istituisce l'Organizzazione internazionale della vigna e del vino,
SU PROPOSTA del Gruppo di esperti “Microbiologia”,
CONSIDERATA la necessità di aggiornare le tecniche analitiche e di controllo microbiologico,
DECIDE di riorganizzare e modificare i paragrafi 1, 2, 3, 4, 5, 6 e 7 della scheda F-COEI-2-CONBAC del Codex enologico internazionale come segue (la scheda F-COEI-2-CONBAC è costituita da diverse pagine; tuttavia, nell'ambito del presente progetto di risoluzione, sono riportate solo le prime 7 pagine in quanto le modifiche da apportare riguardano solo queste):
1. Reidratazione preliminare dei lieviti (Saccharomyces e non-Saccharomyces): LSA (lieviti secchi attivi), AFY (lieviti congelati attivi), COY (lieviti compressi), CRY (crema di lieviti), ENY (lieviti incapsulati e lieviti immobilizzati), levain de tirage
Pesare circa 10 g di preparazione in condizioni sterili (annotare il peso esatto per il calcolo finale della concentrazione).
In condizioni sterili, portare a 100 mL con acqua peptonata salina sterile* a 20-37 °C oppure seguire le indicazioni del fabbricante.
Omogeneizzare delicatamente con una bacchetta, la technica dello stomacher o un agitatore magnetico per 5 min.
Interrompere l'agitazione e lasciar riposare per 20 min a una temperatura ambiente di 20-30 °C.
Omogeneizzare nuovamente a temperatura ambiente per 5 min.
In condizioni sterili, preparare delle diluizioni decimali in serie in acqua o in acqua peptonata salina sterile*; quindi, procedere ai controlli microbiologici sulla soluzione madre omogeneizzata.
Nel caso dei levain de tirage usati per i vini spumanti, in condizioni sterili, prelevare 1 mL e preparare delle diluizioni decimali in serie in acqua o in acqua peptonata salina sterile*; quindi, procedere ai controlli microbiologici sulla soluzione madre omogeneizzata.
*Soluzione peptonata salina: 1 g/L di peptone batteriologico e 8,5 g/L di cloruro di sodio; pH finale 7,0.
2. Reidratazione preliminare delle preparazioni di batteri lattici
Pesare circa 10 g di preparazione di batteri lattici in condizioni sterili (annotare il peso esatto per il calcolo finale della concentrazione).
In condizioni sterili, portare a 100 mL con acqua peptonata salina sterile* (a 25 °C).
Omogeneizzare con un agitatore magnetico o la technica dello stomacher per 5 min.
Interrompere l’agitazione e lasciar riposare per 20 min sempre a temperatura ambiente di 20-30 °C.
Successivamente, omogeneizzare per 5 min a temperatura ambiente.
In condizioni sterili, preparare delle diluizioni decimali in serie in acqua o in acqua peptonata salina sterile*; quindi, procedere ai controlli microbiologici.
*Soluzione peptonata salina: 1 g/L di peptone batteriologico e 8,5g /L di cloruro di sodio; pH finale 7,0.
3. Controllo microbiologico di altri prodotti riportati nel Codex enologico internazionale
Prodotti per i quali è necessario eseguire un controllo della contaminazione batterica/da lieviti/da muffe.
Pesare circa 10 g di prodotto enologico da sottoporre a controllo in condizioni sterili (annotare il peso esatto per il calcolo finale della concentrazione).
In condizioni sterili, portare a 100 mL con acqua peptonata salina sterile*.
Omogeneizzare con un agitatore magnetico o la technica dello stomacher per 5 min.
In condizioni sterili, preparare delle diluizioni decimali in serie in acqua o in acqua peptonata salina sterile*; quindi, procedere ai controlli microbiologici.
*Soluzione peptonata salina: 1 g/L di peptone batteriologico e 8,5 g/L di cloruro di sodio; pH finale 7,0.
4. Conta dei lieviti totali
Mezzo YM (MALT WICKERHAM) agarizzato
Agar batteriologico |
15 g |
Estratto di lievito |
3 g |
Estratto di malto |
3 g |
Peptone |
5 g |
Glucosio |
10 g |
Acqua |
q.b. per 1000 mL |
YPD
Estratto di lievito |
10 g |
Peptone |
20 g |
Glucosio |
20 g |
Agar |
10 g |
Acqua |
q.b. per 1000 mL |
Subito dopo la preparazione, sterilizzare il mezzo in autoclave a 120 °C per 20 min.
In caso di incubazione prolungata, per prevenire la crescita batterica, aggiungere cloramfenicolo a una concentrazione finale di 100 mg/L.
Dopo l'inoculo con adeguate diluizioni del campione, al fine di poter ottenere 30-300 colonie, incubare le piastre a 25-30 °C in condizioni aerobiche per 48-72 ore.
Procedere alla conta delle UFC sulle piastre contenenti da 30 a 300 colonie e rapportare al peso della sostanza secca.
Oltre ai mezzi di coltura proposti, è possibile utilizzare qualsiasi altro terreno riconosciuto a livello internazionale per la coltura di questi microrganismi.
5. Conta di lieviti non-Saccharomyces
5.1. Mezzo contenente lisina
Coltivare i lieviti su un terreno contenente lisina caratterizzato dalla composizione seguente:
Agar |
20 g |
L-lisina monocloridrato |
5 g |
Glucosio |
1 g |
Violetto di bromocresolo |
0.015 g |
Acqua |
q.b. per 1000 mL |
Aggiustare il |
pH 6.8 |
Per garantire la completa dissoluzione, portare a ebollizione per 1 min e poi sterilizzare in autoclave a 120 °C per 20 min.
In caso di incubazione prolungata, per prevenire la crescita batterica, aggiungere cloramfenicolo a una concentrazione finale di 100 mg/L.
Dopo l'inoculo con adeguate diluizioni del campione, incubare le piastre a 25 o 30 °C per 48-96 ore.
Procedere alla conta delle UFC (piastre contenenti da 30 a 300 colonie) e rapportare al peso della sostanza secca.
Oltre ai mezzi di coltura proposti, è possibile utilizzare qualsiasi altro terreno riconosciuto a livello internazionale per la coltura di questi microrganismi.
5.2. Mezzo YPD a cui è stato aggiunto cicloesimide 10 mg/L e incubazione per 6-7 giorni in condizioni aerobiche
In caso di incubazione prolungata, per prevenire la crescita batterica, aggiungere cloramfenicolo a una concentrazione finale di 100 mg/L.
6. Conta dei batteri lattici
MRS (Man, Rogosa e Sharpe) modificato
Coltivare i batteri su un terreno MRS (Man, Rogosa e Sharpe, 1960) a cui è stato aggiunto del succo di pomodoro, caratterizzato dalla composizione seguente:
Agar |
15 g |
Bacto-peptone |
10 g |
Estratto di carne |
8 g |
Estratto di lievito |
4 g |
Acetato di sodio |
5 g |
2 g |
|
Citrato trisodico |
2 g |
Mg (100mg/L) |
2.5 mL |
Mn (20mg/L) |
2 mL |
Tween 80 |
1 mL |
Glucosio |
20 g oppure Glucosio 10 g + Fruttosio 10 g |
HCl oppure NaOH q.b. affinché il pH sia |
4,8 |
Acqua distillata q.b. per |
1000 mL q.b. (quanto basta) |
*Il succo di pomodoro serve a migliorare la crescita dei batteri lattici. Preparazione: succo di pomodoro commerciale (senza additivi) o prodotto in proprio, centrifugare a 4000g per 20 min, filtrare se necessario e utilizzare la frazione chiara del succo.
Sterilizzare in autoclave a 110 °C per 20 min.
Quando si versa il terreno nella piastra Petri, aggiungere pimaricina a una concentrazione finale di 10 mg/L per inibire la crescita di lieviti e muffe.
Incubare a 25 °C per 8-10 giorni in condizioni anaerobiche.
Oltre ai mezzi di coltura proposti, è possibile utilizzare qualsiasi altro terreno riconosciuto a livello internazionale per la coltura di questi microrganismi.
7. Conta delle muffe
Mezzo Czapek-Dox/s agarizzato
Agar |
15 g |
Saccarosio |
30 g |
Na |
3 g |
1 g |
|
Mg |
0.5 g |
KCl |
0.5 g |
0.01 g |
|
Acqua |
q.b. per 1000 mL |
Aggiustare il |
pH 7 |
Sterilizzare in autoclave a 120 °C per 20 min.
Nella piastra Petri contenente il terreno, aggiungere cloramfenicolo a una concentrazione finale di 100 mg/L per inibire la crescita batterica.
Incubare a 20 °C per 10 giorni in condizioni aerobiche.
Oltre ai mezzi di coltura proposti, è possibile utilizzare qualsiasi altro terreno riconosciuto a livello internazionale per la coltura di questi microrganismi.
8. Conta dei batteri acetici
Agar batteriologico |
20 g |
Estratto di lievito |
5 g |
Idrolisato di caseina |
5 g |
Glucosio |
10 g |
Aggiustare |
pH 4.5 |
Acqua |
q.b. per 1000 mL |
Sterilizzare in autoclave a 120 °C per 20 min.
Quando si versa il terreno nella piastra Petri, aggiungere pimaricina a una concentrazione finale di 100 mg/L per inibire la crescita di lieviti e muffe e penicillina a una concentrazione finale di 12,5 mg/L per inibire la crescita dei batteri lattici.
Incubare a 25 °C per 4 giorni in condizioni aerobiche.
Oltre ai mezzi di coltura proposti, è possibile utilizzare qualsiasi altro terreno riconosciuto a livello internazionale per la coltura di questi microrganismi.